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當(dāng)前位置:首頁(yè) > 科研服務(wù) > 蛋白組/代謝組 > 蛋白定性 > LC-MS/MS修飾位點(diǎn)鑒定
服務(wù)介紹應(yīng)用案例常見(jiàn)問(wèn)答

LC-MS/MS修飾位點(diǎn)鑒定 * 技術(shù)原理


通過(guò)液質(zhì)聯(lián)用技術(shù)(LC-MS/MS)結(jié)合數(shù)據(jù)庫(kù)檢索,可以對(duì)目前已知的各種蛋白修飾類型(如磷酸化、乙酰化、甲基化、泛素化、琥珀?;龋┖鸵恍┬》肿铀幬镌诘鞍咨系男揎椢稽c(diǎn)進(jìn)行鑒定。為了更好的檢測(cè)到某特定蛋白的修飾位點(diǎn),需要在檢測(cè)前先采用IP、親和純化或SDS-PAGE等方法分離純化得到目的蛋白,該方法可以同時(shí)檢測(cè)多達(dá)8種已知的蛋白修飾類型。



LC-MS/MS修飾位點(diǎn)鑒定 * 技術(shù)流程


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LC-MS/MS修飾位點(diǎn)鑒定-應(yīng)用范圍


1
單一蛋白或低復(fù)雜程度蛋白樣本的修飾鑒定


2
已知分子量的小分子藥物與蛋白結(jié)合的修飾位點(diǎn)鑒定


添加技術(shù)員微信溝通實(shí)驗(yàn)
18927549347




LC-MS/MS蛋白鑒定 * 服務(wù)信息


項(xiàng)目名稱

客戶提供

結(jié)果交付

實(shí)驗(yàn)周期

價(jià)格

LC-MS/MS蛋白鑒定

蛋白溶液(干冰運(yùn)輸)

蛋白膠條/膠點(diǎn)(冰袋運(yùn)輸)

廣州地區(qū)可上門取樣

樣本信息表

蛋白及肽段鑒定結(jié)果表

質(zhì)譜檢索網(wǎng)頁(yè)

指定肽段的質(zhì)譜圖

質(zhì)譜原始數(shù)據(jù)

實(shí)驗(yàn)報(bào)告

2周

點(diǎn)擊詢價(jià)







LC-MS/MS蛋白鑒定 * 服務(wù)優(yōu)勢(shì)


1
不需要對(duì)修飾進(jìn)行富集,可同時(shí)檢測(cè)多種修飾類型,檢測(cè)周期短
2
近十年服務(wù)經(jīng)驗(yàn),眾多服務(wù)案例,服務(wù)成果得到優(yōu)秀期刊認(rèn)
3
可以提供實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)、樣品制備、質(zhì)量控制、質(zhì)譜處理、生物信息學(xué)和統(tǒng)計(jì)分析等全套服務(wù)內(nèi)容
4
質(zhì)譜儀器先進(jìn),操作人員技術(shù)成熟,鑒定準(zhǔn)確度和靈敏度高
5

售后技術(shù)支持將一直保持到客戶發(fā)表文章,確??蛻舭残倪M(jìn)行下游實(shí)驗(yàn)及投稿





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中文標(biāo)題:植物ESCRT組分FREE1穿梭到細(xì)胞核以減弱脫落酸信號(hào)

發(fā)表期刊:Nature Plants

影響因子:13.256

合作單位:華南師范大學(xué)

運(yùn)用技術(shù):IP-MS/MS磷酸化位點(diǎn)檢測(cè)(由輝駿生物提供技術(shù)支持)




● 研究背景


內(nèi)吞體分選轉(zhuǎn)運(yùn)復(fù)合體(ESCRT)是真核生物中存在的保守的囊泡運(yùn)輸調(diào)控機(jī)器,由20多個(gè)蛋白組成并分成ESCRT-0, -I, -II, -III以及VPS4/SKD1-LIP5等5個(gè)蛋白復(fù)合物,它們協(xié)同作用識(shí)別泛素化修飾的膜蛋白并將其分選到細(xì)胞內(nèi)多泡體(MVB)的內(nèi)小泡中,這樣當(dāng)多泡體與液泡融合后,膜蛋白即被運(yùn)輸至液泡內(nèi)腔而被降解。已有研究表明,ESCRT蛋白參與了植物激素脫落酸(ABA)的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)。作者團(tuán)隊(duì)前期已經(jīng)發(fā)掘了植物特有的ESCRT復(fù)合物組分FREE1,并解析了其調(diào)控膜蛋白轉(zhuǎn)運(yùn)和自噬降解的功能,而有關(guān)ESCRT蛋白通過(guò)何組分以及哪種途徑參與植物激素脫r落酸(ABA)的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo),仍有待進(jìn)一步研究。

 



● 研究結(jié)果


1.     通過(guò)使用新創(chuàng)建的free1-ctmut植物,發(fā)現(xiàn)FREE1的C-末端盤繞線圈結(jié)構(gòu)域賦予ABA超敏反應(yīng)


在這項(xiàng)研究中,研究者利用CRISPR-Cas9技術(shù)繞過(guò)FREE1功能缺失的致死性,得到一個(gè)特異影響FREE1蛋白入核的突變體Free1-ctmut。Sanger測(cè)序結(jié)果顯示該突變體倒數(shù)第二個(gè)外顯子內(nèi)有8bp的缺失(圖1A),這導(dǎo)致FREE1蛋白序列在581個(gè)氨基酸位點(diǎn)上有一個(gè)提前終止密碼子,引入了558-581個(gè)氨基酸殘基的外源多肽(圖1B)。WB分析檢測(cè)到Free1-ctmut植物中較小的內(nèi)源FREE1,表明產(chǎn)生了截短的FREE1蛋白,并缺失了羧基末端的尾巴(圖1C)。Free1-ctmut突變體在正常生長(zhǎng)條件下沒(méi)有表現(xiàn)出明顯的表型,但與野生型(WT)植株相比,對(duì)ABA介導(dǎo)的抑制成苗和ABA誘導(dǎo)的離體葉片衰老表現(xiàn)出更高的敏感性。

 

FREE1蛋白有三個(gè)已知的結(jié)構(gòu)域,包括氨基末端的固有無(wú)序區(qū)、FYVE結(jié)構(gòu)域和C-末端卷曲圈區(qū)。為了深入了解FREE1蛋白不同結(jié)構(gòu)域在介導(dǎo)Free1-ctmut植株脫落酸(ABA)敏感性中的作用,本研究將4個(gè)不同版本的綠色熒光蛋白分別與FREE1、Free1-ctmut、FREE1(?FYVE)和FREE1(?CC)融合到Free1-ctmut中,并對(duì)其進(jìn)行了表型分析。如圖1D-F所示,全長(zhǎng)FREE1完全補(bǔ)充了Free1-ctmut的ABA敏感表型,而C-末端截短的Free1-ctmut和FREE1(?CC)未能補(bǔ)充Free1-ctmut的表型,突出了FREE1 C末端在賦予Free1-ctmut植物的ABA超敏感表型中的功能重要性。先前的研究發(fā)現(xiàn),F(xiàn)REE1的N端部分負(fù)責(zé)其與ABA受體的相互作用,而這個(gè)新建立的Free1-ctmut植物中,缺失部分位于C端卷曲區(qū)域(圖1),理論上不影響FREE1與ABA受體的相互作用。因此,F(xiàn)ree1-ctmut的ABA超敏反應(yīng)不太可能是由MVB介導(dǎo)的空泡分選缺陷和ABA受體的降解引起的。研究者通過(guò)雜交實(shí)驗(yàn)進(jìn)一步驗(yàn)證猜想,并得出結(jié)論:Free1-ctmut作為ESCRT組分正常發(fā)揮作用,F(xiàn)REE1通過(guò)C末端負(fù)性調(diào)節(jié)ABA反應(yīng),其機(jī)制不同于先前報(bào)道的FREE1調(diào)節(jié)ABA受體內(nèi)體分選的功能。

IP-MS/MS磷酸化位點(diǎn)檢測(cè)、磷酸化位點(diǎn)檢測(cè)、IP-MS/MS實(shí)驗(yàn)服務(wù).png

圖1



2. ABA促進(jìn)FREE1核輸入,核定位的FREE1補(bǔ)充FREE1-ctmut對(duì)ABA的超敏反應(yīng)


接下來(lái),研究者使用先前建立的GFP-FREE1/FREE1互補(bǔ)系觀察了FREE1亞細(xì)胞定位模式對(duì)ABA的響應(yīng)。有趣的是,ABA處理導(dǎo)致在共聚焦顯微鏡下觀察到的細(xì)胞核中GFP-FREE1的水平顯著增加,并在免疫印跡分析中檢測(cè)到。(圖2A,B)。此外,WT植株細(xì)胞核中內(nèi)源FREE1水平的增加對(duì)ABA的響應(yīng)進(jìn)一步支持了ABA促進(jìn)FREE1核進(jìn)入的結(jié)論(圖2C)。此外,在GFP-FREE1-CTmut/Free1-ctmut系(圖2D)中,細(xì)胞核中GFP-FREE1-CTmut的水平?jīng)]有明顯增加。此外,F(xiàn)REE1抗體的WB分析進(jìn)一步證實(shí),內(nèi)源FREE1-CTmut蛋白未能對(duì)ABA做出反應(yīng)而移位到細(xì)胞核(圖2E)。這些結(jié)果表明,F(xiàn)REE1可能通過(guò)其在細(xì)胞核內(nèi)的作用發(fā)揮其對(duì)ABA信號(hào)的抑制作用,而FREE1的C末端對(duì)于其穿梭到細(xì)胞核和植物對(duì)ABA的響應(yīng)是必不可少的。為了提高FREE1在細(xì)胞核中的表達(dá)水平,研究者建立了GFP-FREE1-NLS/FREE1-ctmut和GFP-FREE1-NES(Mut)/FREE1-ctmut轉(zhuǎn)基因株系。GFP-FREE1-NLS顯示顯性的細(xì)胞核定位,而GFP-FREE1-NES(Mut)在沒(méi)有ABA處理的情況下核定位明顯增加(圖2F)。進(jìn)一步的表型分析表明,GFP-FREE1-NLS和GFP-FREE1-NES(Mut)都能夠補(bǔ)充FREE1-ctmut對(duì)ABA的超敏表型(圖2G,H)。綜上所述,ABA處理促進(jìn)了FREE1的核積累,但不促進(jìn)FREE1-CTmut的核積累,次外,F(xiàn)REE1的核積累能夠補(bǔ)充FREE1-ctmut對(duì)ABA的敏感表型。


IP-MS/MS磷酸化位點(diǎn)檢測(cè)、磷酸化位點(diǎn)檢測(cè)、IP-MS/MS實(shí)驗(yàn)服務(wù).png

圖2



3. ABA促進(jìn)FREE1磷酸化,磷酸化的FREE1主要定位于細(xì)胞核


大量研究表明,磷酸化修飾可調(diào)節(jié)蛋白質(zhì)核質(zhì)穿梭。為了驗(yàn)證FREE1在用ABA處理時(shí)是否會(huì)發(fā)生磷酸化修飾,研究者檢測(cè)了有或沒(méi)有ABA處理的FREE1的磷酸化水平,結(jié)果顯示ABA處理顯著增加了FREE1的磷酸化水平(圖3A)。在GFP-FREE1CTmut/FREE1-CTmut系中檢測(cè)FREE1-CTmut的磷酸化水平,結(jié)果表明,F(xiàn)REE1-CTmut磷酸化水平的增加遠(yuǎn)小于FREE1(圖3A),這表明ABA誘導(dǎo)的FREE1磷酸化需要C端。接下來(lái),研究者在核和胞質(zhì)組分中檢測(cè)有無(wú)ABA處理的FREE1磷酸化水平,結(jié)果表明,磷酸化的FREE1主要位于細(xì)胞核中(圖3B),表明FREE1可能需要進(jìn)行磷酸化修飾才能在細(xì)胞核中積累。后續(xù)的時(shí)程和劑量反應(yīng)實(shí)驗(yàn)也進(jìn)一步表明,ABA能夠誘導(dǎo)FREE1磷酸化,這需要FREE1的C末端;磷酸化的FREE1主要位于細(xì)胞核中。


IP-MS/MS磷酸化位點(diǎn)檢測(cè)、磷酸化位點(diǎn)檢測(cè)、IP-MS/MS實(shí)驗(yàn)服務(wù).png

圖3



4. 依賴于SnRK2.2/2.3的FREE1磷酸化是ABA誘導(dǎo)的FREE1核輸入所必需的


多研究表明,SnRK2分支蛋白激酶,包括SnRK2.2、SnRK2.3和SnRK2.6,是介導(dǎo)植物對(duì)ABA反應(yīng)的關(guān)鍵正調(diào)控因子,ABA強(qiáng)烈激活A(yù)BA以進(jìn)一步磷酸化下游因子。為了測(cè)試SnRK2激酶是否磷酸化FREE1對(duì)ABA的響應(yīng),研究者通過(guò)雙分子熒光互補(bǔ)(BIFC)等分析證實(shí)了FREE1與SnRK2.2/2.3在擬南芥葉片原生質(zhì)體的細(xì)胞核和胞漿中的相互作用(圖3C)。Co-IP結(jié)果表明,ABA處理增強(qiáng)了FREE1與SnRK2.2和SnRK2.3之間的聯(lián)系(圖3D)。接下來(lái),研究者利用幾個(gè)含有結(jié)構(gòu)域截?cái)嗟腇REE1突變體,用于與SnRK2的相互作用分析。結(jié)果表明,F(xiàn)REE1的C-末端卷曲區(qū)負(fù)責(zé)與SnRK2.2和SnRK2.3的相互作用。

 

接下來(lái),研究者進(jìn)行了體外磷酸化實(shí)驗(yàn),以測(cè)試SnRK2激酶是否直接磷酸化FREE1。將純化的His-SUMO-FREE1分別與ABA處理的轉(zhuǎn)基因植物GFP-SnRK2蛋白和大腸桿菌His-MBP-SnRK2蛋白孵育。在這兩種情況下,His-SUMO-FREE1的磷酸化都很容易檢測(cè)到(圖3E)。此外,體內(nèi)外實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,SnRK2.2和SnRK2.3是ABA誘導(dǎo)FREE1磷酸化的預(yù)期激酶蛋白。為了進(jìn)一步揭示ABA誘導(dǎo)和SnRK2S依賴的FREE1磷酸化是否與ABA誘導(dǎo)的FREE1核導(dǎo)入有關(guān),研究者將GFP-FREE1導(dǎo)入現(xiàn)有SnRK2.2/2.3/2.6三重突變體的葉片原生質(zhì)體中,在ABA處理后的SnRK2.2/2.3/2.6原生質(zhì)體中沒(méi)有觀察到明顯的FREE1核導(dǎo)入增加(圖3F)。這一觀察結(jié)果得到證據(jù)的支持,即在ABA處理后,SnRK2.2/2.3/2.6三重突變體細(xì)胞核中內(nèi)源性FREE1的水平?jīng)]有明顯增加(圖3G)。綜上所述,這些結(jié)果表明,依賴于SnRK2.2和SnRK2.3的FREE1磷酸化對(duì)于ABA誘導(dǎo)的FREE1核進(jìn)口是必要的。



5. ABA誘導(dǎo)的FREE1核進(jìn)口需要絲氨酸殘基S530/S533的磷酸化


為了確定相應(yīng)的FREE1磷酸化殘基對(duì)ABA的響應(yīng),研究者對(duì)免疫沉淀的GFP-FREE1和GFP-Free1-ctmut蛋白進(jìn)行了質(zhì)譜分析。結(jié)果顯示,在GFP-Free1-ctmut蛋白中檢測(cè)到的兩個(gè)磷酸化位點(diǎn)S530和S533位于FREE1 C-末端卷曲圈區(qū),而GFP-FREE1-CTmut蛋白中檢測(cè)不到。Free1-ctmut蛋白的缺失可能破壞了盤繞區(qū)域的結(jié)構(gòu),從而降低了S530和S533的磷酸化。因此,我們將目前的研究重點(diǎn)放在S530和S533在誘導(dǎo)ABA反應(yīng)中的功能特性上。

 

為了進(jìn)一步驗(yàn)證S530和S533的磷酸化是否參與了ABA誘導(dǎo)的FREE1核輸入,我們將YFP-FREE1(S530A/S533A)和YFP-FREE1(S530D/S533D)這兩個(gè)絲氨酸位點(diǎn)突變?yōu)榉橇姿峄谋彼峄蛄姿峄奶於彼釟埢氲紽REE1突變株中,進(jìn)行FREE1定位觀察和植物表型分析。對(duì)ABA處理和未處理的植株不同蛋白質(zhì)組分的共聚焦觀察和免疫印跡分析均未發(fā)現(xiàn)YFP-FREE1(S530A/S533A)在細(xì)胞核內(nèi)明顯積聚(圖4B,C)。相反,YFP-FREE1(S530D/S533D)在沒(méi)有ABA處理的補(bǔ)充植株中表現(xiàn)出明顯的核積累(圖4D,E)。此外,與免疫沉淀-質(zhì)譜結(jié)果一致,ABA處理的轉(zhuǎn)基因植株和體外磷酸化實(shí)驗(yàn)中純化的His-SUMO-FREE1(S530A/S533A)的YFPFREE1(S530A/S533A)的磷酸化水平都明顯降低(圖3E、4F)。YFP-FREE1(S530A/S533A)/Free1-ctmut表現(xiàn)出與Free1-ctmut相似的ABA過(guò)敏性,而YFP-FREE1(S530D/S533D)/Free1-ctmut在成苗和ABA誘導(dǎo)的葉片衰老方面與WT相似(圖4G,H),進(jìn)一步支持S530/S533的磷酸化是必需的。


IP-MS/MS磷酸化位點(diǎn)檢測(cè)、磷酸化位點(diǎn)檢測(cè)、IP-MS/MS實(shí)驗(yàn)服務(wù).png

圖4



6. FREE1通過(guò)抑制ABF4和ABI5的DNA結(jié)合能力來(lái)抑制ABF4和ABI5的轉(zhuǎn)錄活性


為了研究FREE1在細(xì)胞核中的功能對(duì)ABA的響應(yīng),研究者以FREE1(231-601)的C末端部分為誘餌,在擬南芥互補(bǔ)DNA文庫(kù)中進(jìn)行了酵母雙雜交篩選,在陽(yáng)性克隆鑒定了編碼轉(zhuǎn)錄激活因子ABF4和ABI5的克隆,用于進(jìn)一步的蛋白質(zhì)相互作用分析。酵母雙雜交結(jié)果顯示,ABF4和ABI5都與FREE1(231-601)相互作用(圖5A),BIFC分析進(jìn)一步證實(shí)了這種相互作用(圖5B)。在酵母雙雜交試驗(yàn)中進(jìn)一步的精細(xì)定位表明,F(xiàn)ree1-ctmut(231-581)失去了與ABF4和ABI5的相互作用,而缺失了N末端的FREE1(421-601)仍然可以與這些轉(zhuǎn)錄因子相互作用。這些結(jié)果表明,F(xiàn)REE1的C端螺旋結(jié)構(gòu)域?qū)iT負(fù)責(zé)與ABF4和ABI5的DNA結(jié)合域的相互作用(圖5A)。免疫共沉淀試驗(yàn)表明,在沒(méi)有ABA的情況下,F(xiàn)REE1與ABF4或ABI5之間的相互作用很弱,但在ABA處理后得到加強(qiáng)(圖5C,D)。這些結(jié)果表明,F(xiàn)REE1C-末端殘基的磷酸化在調(diào)節(jié)ABA反應(yīng)中起著重要作用。

 

為了確定FREE1是否影響ABF4和ABI5在植物細(xì)胞中的轉(zhuǎn)錄激活活性,研究者在擬南芥原生質(zhì)體中進(jìn)行了雙熒光素酶的報(bào)告實(shí)驗(yàn)。結(jié)果表明,在ABF4或ABI5單獨(dú)存在的情況下,ABA顯著誘導(dǎo)PAO1或EM6的表達(dá),當(dāng)與GFP-FREE1共表達(dá)時(shí),這種誘導(dǎo)被顯著抑制,但與GFP對(duì)照(圖5E,F(xiàn))不同,這表明FREE1直接抑制ABF4和ABI5對(duì)ABA的轉(zhuǎn)錄激活活性。接下來(lái),為了檢測(cè)FREE1是否通過(guò)競(jìng)爭(zhēng)性結(jié)合ABF4和ABI5轉(zhuǎn)錄因子的DNA結(jié)合域來(lái)抑制這兩種轉(zhuǎn)錄因子的轉(zhuǎn)錄激活活性,研究者通過(guò)電泳遷移率改變分析(EMSA)研究了FREE1對(duì)這兩種轉(zhuǎn)錄因子與下游基因順式調(diào)控序列結(jié)合活性的影響。結(jié)果表明,F(xiàn)REE1,而不是GFP對(duì)照,以劑量依賴的方式抑制ABF4和ABI5的DNA結(jié)合能力(圖5G,H),說(shuō)明了FREE1對(duì)ABF4和ABI5轉(zhuǎn)錄激活活性的直接抑制作用。利用ChIP-qPCR方法進(jìn)一步檢測(cè)Free1-ctmut突變是否會(huì)導(dǎo)致GFP-ABF4和GFP-ABI5對(duì)其靶基因啟動(dòng)子序列的富集作用增強(qiáng),并以GFP為陰性對(duì)照。結(jié)果表明,F(xiàn)REE1確實(shí)減弱了ABF4和ABI5對(duì)下游靶基因啟動(dòng)子區(qū)域的DNA結(jié)合能力(圖5I,J)。


IP-MS/MS磷酸化位點(diǎn)檢測(cè)、磷酸化位點(diǎn)檢測(cè)、IP-MS/MS實(shí)驗(yàn)服務(wù).png

圖5



7. ABF4或ABI5的缺失挽救了在Free1-ctmut突變體中產(chǎn)生的ABA超敏表型


Free1-ctmut突變體對(duì)ABA的超敏表型很可能主要是由于ABF4和ABI5在細(xì)胞核內(nèi)過(guò)度激活而沒(méi)有FREE1抑制所致。為了證實(shí)這種可能性,研究者測(cè)試了ABF4或ABI5的缺失是否會(huì)通過(guò)使Free1-ctmut與ABF4或ABI5突變體雜交來(lái)挽救在Free1-ctmut突變體中觀察到的ABA超敏表型。與預(yù)期一致,F(xiàn)ree1-ctmut的ABF4或ABI5突變?cè)诔擅绾虯BA誘導(dǎo)的葉片衰老方面都表現(xiàn)出WT ABA反應(yīng)(圖6A,B),即Free1-ctmut的ABA敏感表型可能是由ABF4和ABI5轉(zhuǎn)錄活性的過(guò)度激活引起的。此外,接下來(lái),研究者檢測(cè)了ABA反應(yīng)基因NYE1、NYC1、PAO1、RD29A、RD29B、NYE2和SAG29在WT、Free1-ctmut突變體ABF4、ABI5、Free1-ctmut/ABF4和Free1-ctmut/ABI5中的相對(duì)表達(dá)水平。結(jié)果顯示,所有檢測(cè)到的基因在未經(jīng)ABA處理的Free1-ctmut突變體中的表達(dá)均升高,而在ABA處理下,表達(dá)誘導(dǎo)的升高更為顯著。然而,ABF4或ABI5突變消除了Free1-ctmut中ABA反應(yīng)基因的這種表達(dá)誘導(dǎo)(圖6C,D)??傊?,這些結(jié)果表明,在Free1-ctmut中ABA反應(yīng)基因的表達(dá)上調(diào)是由于ABF4和ABI5轉(zhuǎn)錄活性的過(guò)度激活所致。

IP-MS/MS磷酸化位點(diǎn)檢測(cè)、磷酸化位點(diǎn)檢測(cè)、IP-MS/MS實(shí)驗(yàn)服務(wù).png

圖6



● 結(jié)論


研究在轉(zhuǎn)錄水平上證明了細(xì)胞膜轉(zhuǎn)運(yùn)和ABA信號(hào)之間的串?dāng)_,并強(qiáng)調(diào)了植物ESCRT亞基FREE1的兼職特性,它除了在細(xì)胞質(zhì)中的膜轉(zhuǎn)運(yùn)中發(fā)揮作用外,還在細(xì)胞核中進(jìn)化了獨(dú)特的非內(nèi)體功能。


Q1:蛋白質(zhì)譜鑒定不成功一般有哪些因素?

A:質(zhì)譜鑒定不成功主要可以分為兩類,一類是質(zhì)譜效果不好,一類是沒(méi)有可參考的蛋白數(shù)據(jù)庫(kù),質(zhì)譜效果不好的原因又可以細(xì)分為蛋白點(diǎn)太淡以至于蛋白含量過(guò)低(常見(jiàn)銀染的點(diǎn))、蛋白酶解及質(zhì)譜操作失誤等,要避免這些因素要盡量取顏色深一些的蛋白點(diǎn),并且取的蛋白點(diǎn)面積需要適當(dāng)大一些。


Q2:做蛋白鑒定檢索時(shí)為什么同一個(gè)編號(hào)對(duì)應(yīng)了很多蛋白質(zhì)?

A:因?yàn)橐粋€(gè)蛋白家族中常常含有多個(gè)同源性很高的蛋白質(zhì),這些蛋白質(zhì)被酶切之后,很可能會(huì)產(chǎn)生很多相同的肽段,軟件在進(jìn)行定性分析時(shí),就會(huì)將這些肽段均歸于得分高的那種蛋白質(zhì),其他同源蛋白不計(jì)分,并且這些同源蛋白都采用同一編號(hào)。


Q3:怎么判定哪些蛋白是和自己研究相關(guān)的蛋白,挑選什么樣的蛋白進(jìn)行后期實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證?

A:需要研究人員根據(jù)自己研究的相關(guān)生物學(xué)背景,再結(jié)合生物信息學(xué)分析的結(jié)果,以及查看相關(guān)的文獻(xiàn)資料來(lái)確認(rèn)哪些蛋白可以用于后續(xù)深入的研究。后期的蛋白驗(yàn)證實(shí)驗(yàn),一般情況下是根據(jù)客戶的需要,結(jié)合課題本身,在所篩選到的差異的蛋白中,找到自己關(guān)注的蛋白。并且在挑選的時(shí)候盡量挑蛋白可信度高的、差異變化較明顯的蛋白。目前驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)的成功率比較低,一般情況下能有50%的概率已經(jīng)是非常好的結(jié)果。


Q4:蛋白質(zhì)鑒定結(jié)果較少的可能原因是什么?

A:●根據(jù)樣品SDS-PAGE圖(注:SDS-PAGE無(wú)過(guò)度染色情況),判斷樣本本身的蛋白質(zhì)豐富程度,蛋白質(zhì)條帶較少或者較淺(含量低)都會(huì)導(dǎo)致鑒定結(jié)果不佳,可考慮增加樣本量再進(jìn)行檢測(cè)。

●根據(jù)SDS-PAGE圖判斷樣品中是否存在高豐度蛋白質(zhì),高豐度蛋白質(zhì)會(huì)影響樣本整體蛋白質(zhì)鑒定數(shù)量。

●有些物種的數(shù)據(jù)庫(kù)質(zhì)量不好,包含的蛋白數(shù)目過(guò)少,這種可以考慮換大一級(jí)的物種分類數(shù)據(jù)庫(kù),或者選擇在進(jìn)化樹(shù)上同源性較近的、研究比較清楚的、基因組數(shù)據(jù)庫(kù)相對(duì)完整的模式物種的數(shù)據(jù)庫(kù)重新查庫(kù)。

●樣本中有污染或干擾物質(zhì),例如常見(jiàn)的有PEG、各種表面活性劑(如SDS、CHAPS、Triton、Tweens、NP-40等),一般在質(zhì)譜的表現(xiàn)為規(guī)律的分子量間隔約44的峰。

●輝駿生物會(huì)根據(jù)TIC、basepeak圖等,判斷酶解、儀器狀態(tài)等是否正常,如果是儀器問(wèn)題導(dǎo)致的鑒定結(jié)果不好,我方會(huì)即刻告知客戶并安排重復(fù)實(shí)驗(yàn)。


Q5:LC-MS/MS實(shí)驗(yàn)?zāi)芊裉峁┑鞍踪|(zhì)定量信息或確定樣品中不同蛋白質(zhì)的相對(duì)含量?

A:我們通常說(shuō)的質(zhì)譜鑒定(LC-MS/MS實(shí)驗(yàn))為定性實(shí)驗(yàn),不能做定量分析,但如果您要比較某樣本中不同蛋白質(zhì)的相對(duì)含量,可參考蛋白質(zhì)質(zhì)譜鑒定結(jié)果中的emPAI值(據(jù)譜圖數(shù)、肽段數(shù)或肽段得分等來(lái)獲得的近似定量信息)來(lái)大概評(píng)估每個(gè)蛋白的豐度情況,但這只是粗略估計(jì)。

如果您要比較蛋白在多組樣本間的相對(duì)表達(dá)差異,請(qǐng)選擇蛋白組組學(xué)的方法檢測(cè),如label free,iTRAQTMTDIA等,并且通常需要設(shè)置樣本重復(fù),以便進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析。


Q6:為什么質(zhì)譜檢測(cè)到的蛋白質(zhì)只是部分氨基酸序列,這樣的數(shù)據(jù)是否可信?

A:質(zhì)譜鑒定需要先進(jìn)行蛋白質(zhì)的酶解,酶解后的肽段再進(jìn)行質(zhì)譜分析。蛋白質(zhì)酶解成肽段的回收率不能達(dá)到100%,一定會(huì)發(fā)生肽段的損失;如果是膠內(nèi)酶解肽段的回收率會(huì)更低一些。

由于蛋白質(zhì)多種修飾形式的存在,會(huì)導(dǎo)致部分序列酶解不完全;或者由于蛋白質(zhì)的序列特點(diǎn)(酶切位點(diǎn)過(guò)于稀疏或者密集),導(dǎo)致酶切后的肽段過(guò)小或者過(guò)大,都不利于質(zhì)譜檢測(cè)。

 根據(jù)質(zhì)譜檢測(cè)原理,肽段需要被離子化后才能被檢測(cè)到。由于肽段序列特點(diǎn),導(dǎo)致某些不容易被離子化的片段很難被檢測(cè)到。

因此,質(zhì)譜法鑒定蛋白質(zhì)的結(jié)果一般都只是鑒定到蛋白質(zhì)的部分序列,即可以達(dá)到定性蛋白質(zhì)的目的。


Q7:質(zhì)譜結(jié)果鑒定到很多蛋白,如何評(píng)估蛋白的可信度,或者如果篩選蛋白進(jìn)行后續(xù)研究?

A:輝駿生物提供的鑒定表格中包括了原始蛋白列表和過(guò)濾后的蛋白列表,其中過(guò)濾后的蛋白列表中為篩選(pep_expect<0.05)后的蛋白,均為可信蛋白。所有蛋白按照得分排序,得分越高的蛋白可信度越高。但要注意,如果您做的是IP,pull down類實(shí)驗(yàn),有意義的蛋白可能由于本身豐度較低而得分低、排名靠后,針對(duì)這種情況我們建議您主要依據(jù)蛋白功能判斷,其次參考得分。


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